토끼 출혈증 바이러스에 감염된 조직을 10% 포르말린 고정, 파라핀 블록으로 보관했던 것으로 표본을 만들고 biotin 표지된 올리고뉴클레오티드 probe를 사용하는 in situ hybridization 기법으로 viral RNA를 조사하였다. in situ hybridization 기법은 핵산을 규명하는 다른 방법들에 비하여 신속하고 특이성이 높은 기법으로 모든 과정이 Microtrobe(Tm) capillary action system에서 1-2시간 이내에 완료된다. Viral RNA는 간세포의 세포질과 신장의 피질에서 주로 관찰되었으나, 폐조직과 신장의 수질에서는 부분적으로 적색신호가 보였다. 비록 기술적인 한계를 가지고 있지만 다른 핵산 진단방법 보다 많은 장점을 가지고 있어 조직 병리학적으로 바이러스 진단하는데 하나의 독특한 기법으로 채용되리라 기대된다.
In this paper, a in situ hybridization(ISH) has been used to investigate the yield of viral RNA expression from each organ tissues. It is studied to establish a rapidly, specific diagnostic method detecting rabbit haemorrhagic disease virus(RHDV) RNA in 10% formalin-fixed, paraffin-embedded tissues of naturally RHDV-infected rabbits using oligonucleotide probe to be made by RHDV total sequences. Biotin was used as the oligonucleotide probe marker. In situ hybridization is detected the virus genome in the cells and tissue as specifically compared with others nucleic acid hybridization method. All ISH procedure of RHDV were completed to Microbrobe(Tm) capillary action system within 1-2 hours. In this report, RHDV was distributed widely in the cytoplasm of liver cell and the cortex of kidney but lung tissue and medulla of kidney were showed to positive reaction at locally. Although not entirely free of technical limitations, nucleic acid identification holds advantages over other diagnostic tests, including exquisite sensitivity, specificity, interchangeability and speed. It is expected that, in the immediate future viral nucleic acid detection will be a prominent part of the methods used in histopathology.
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