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Inhibitory Effects on Oral Microbial Activity and Production of Lipopolysaccharides-Induced Pro-Inflammatory Mediators in Raw264.7 Macrophages of Ethanol Extract of Perilla flutescens (L.) Britton = Inhibitory Effects on Oral Microbial Activity and Production of Lipopolysaccharides-Induced Pro-Inflammatory Mediators in Raw264.7 Macrophages of Ethanol Extract of Perilla flutescens (L.) Britton
저자
( Moon-jin Jeong ) ; ( Do-seon Lim ) ; ( Myoung-hwa Lee ) (Department of Oral Histology and Developmental Biology, School of Dentistry, Chosun University, Gwangju 61452, Korea) ; ( Kyungwon Heo ) (Department of Oral Histology and Developmental Biology, School of Dentistry, Chosun University, Gwangju 61452, Korea) ; ( Han-hong Kim ) ; ( Soon-jeong Jeong ) (Department of Dental Hygiene & Institute of Basic Science for Well-Aging, Youngsan University, Yangsan 50510, Korea)
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2020
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KCI등재
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학술저널
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213-220(8쪽)
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Background: The leaves of Perilla frutescens, commonly called perilla and used for food in Korea, contain components with a variety of biological effects and potential therapeutic applications. The purpose of this study was to identify the components of 70% ethanol extracted Perilla frutescens (EEPF) and determine its inhibitory effects on oral microbial activity and production of nitric oxide (NO) and prostaglandin E<sub>2</sub> (PGE<sub>2</sub>) in lipopolysaccharides (LPS)-stimulated Raw264.7 macrophages, consequently, to confirm the possibility of using EEPF as a functional component for improving the oral environment and preventing inflammation.
Methods: One kg of P. frutescens leaves was extracted with 70% ethanol and dried at -70℃. EEPF was analyzed using high-performance liquid chromatography analysis, and antimicrobial activity against oral microorganisms was revealed using the disk diffusion test. Cell viability was elucidated using a methylthiazolydiphenyl-tetrazolium bromide assay, and the effect of EEPF on LPS-induced morphological variation was confirmed through microscopic observation. The effect of EEPF on LPS-induced production of pro-inflammatory mediators, NO and PGE<sub>2</sub> was confirmed by the NO assay and PGE<sub>2</sub> enzyme-linked immunosorbent assay.
Results: The main component of EEPF was rosemarinic acid, and EEPF showed weak anti-bacterial and anti-fungal effects against microorganisms living in the oral cavity. EEPF did not show toxicity to Raw264.7 macrophages and had inhibitory effects on the morphological variations and production of pro-inflammatory mediators, NO and PGE<sub>2</sub> in LPS-stimulated Raw264.7 macrophages.
Conclusion: EEPF can be used as a functional material for improving the oral environment through the control of oral microorganisms and for modulating inflammation by inhibiting the production of inflammatory mediators.
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