KCI등재후보
심장근육세포에서 사이원반 형성에 따른 Connexin43과 Pan-cadherin의 분포 = Distribution of Connexin43 and Pan-cadherin in Cardiac Myocytes during Intercalated Disc Formation
저자
발행기관
학술지명
권호사항
발행연도
2003
작성언어
-주제어
KDC
511
등재정보
KCI등재후보,ESCI
자료형태
학술저널
수록면
195-205(11쪽)
제공처
사이원반이 형성되는 과정을 알아보기 위해 생후 3, 7, 14, 21, 35, 84, 120일의 Sprague Dawley계 흰쥐 심실조직들과 배양 1, 3, 5, 7일의 H9c2 세포와 C2C12 세포주를 사용하였다. 심실조직의 냉동절편들 또는 배양된 세포주들에서 각 시기마다 교통반점의 표지자인 connexin43과 부착막의 표지자인 pan-cadherin의 발현을 간접면역형광법으로 조사하였다. 배양된 세포는 도립현미경으로, 조직 표본은 투과전자현미경으로 형태학적인 소견을 관찰하였다. H9c2 및 C2C12 세포들은 여러 개의 핵을 가진 뼈대근육과 비슷한 근관을 형성하였다. 생후 3~21일의 냉동절편에서 connexin43은 그 반응의 양상에 차이는 있었지만, 세포막 주위에 점상으로 보였다. 35일과 84일의 절편에서는 근육형질 내에 비교적 균일한 반응이 나타나기 시작하였고, 사이원반이 될 부위에서는 각 시기에 선모양과 두꺼운 띠를 형성하였다. 120일의 절편에서는 두꺼운 띠 부위가 점상으로 흩어졌다. H9c2 및 C2C12 세포에서 이 단백질은 세포질 내에 균일한 반 응을 보이거나 점상으로 나타났지만, 배양기간동안 반응강도는 매우 약했다. 3일과 7일의 냉동절편에서 pan-cadherin은 주로 선상으로 보였다. 14일과 21일의 절편에서 선상의 반응이 더욱 강해졌고, connexin43보다 빠른 시기에 근육형질 내에 그 반응이 나타났다. 35일과 84일의 절편에서 사이원반이 될 부위에 두꺼운 띠를 형성하였다. 120일의 절편에서 이전 시기에 비해 그 띠의 수는 적어졌지만, 큰 덩어리 모양의 반응이 나타났다. H9c2 및 C2C12 세포에서 pan-cadherin은 선상이나 점상의 반응을 보였지만, 절편에 비해 반응강도는 일반적으로 매우 약했다. 3~120일의 심실조직 미세구조에서 사이원 반이 모두 관찰되었고, 그 구성요소인 교통반점, 부착막, 부착반점의 전형적인 구조들을 볼 수 있었다. 결론적으로, Sprague Dawley계 흰쥐의 심실근육에서 생후 사이원반의 형성과정은 각 시기에 따른 connexin43과 pancadherin의 분포양상과 일치한다는 것을 알 수 있었다. 이러한 자료들은 이식된 세포들과 정상적인 심장근육세포들 사이에 세포사이결합을 형성하는 기전을 이해하는데 도움을 줄 것으로 생각한다.
더보기This experiment was aimed to elucidate about the forming process of intercalated discs. Each ventricular myocardium of Sprague Dawley rats was used at postnatal 3, 7, 14, 21, 35, 84, 120 days and cell lines such as H9c2 cell and C2C12 cell were also cultivated during 1, 3, 5, 7 day. Expressional change of connexin43, a marker of gap junction and pan-cadherin, a protein representing fascia adherence were stained with indirect immuno-fluorescent technique in the cryo-sectioned ventricular tissues and the cells. The cultivated cells were observed under inverted microscope and the myocardial tissues were processed for the recording with transmission electron microscope at each time. Myotubes consisting of multi-nucleated cells similar to skeletal muscle were formed on both of H9c2 cells and C2C12 cells. Connexin43 showed generally punctuate pattern across the cell membrane in the cryo-sectioned specimens at postnatal 3 to 21 days. The reaction at nascent intercalated discs formed linear appearance and thick bands at postnatal 35 and 84 days, respectively, although the protein initially expressed an equal reaction throughout sarcoplasm. On postnatal 120 days, there were dispersed in dots instead of regions of the thick band. Connexin43 in the cytoplasm of H9c2 and C2C12 cells was distributed in punctuate or homogenous reaction, however, the reaction intensity regardless of culture duration was very weak. Pan-cadherin showed mainly stripe-shape in the tissue specimens at postnatal 3 and 7 days. This protein formed more dense stripe-shape at postnatal 14 and 21 days than before. Comparing with connexin43, cadherin was earlier expressed in the sarcoplasm at these time points. A thick band abundantly appeared on the region of nascent intercalated disc at postnatal 35 and 84 days. Comparing with these days, some of the bands changed into mass of dots though the number of band was decreased at postnatal 120 days. Cadherin in H9c2 and C2C12 cells showed stripe- or punctuate- shape, however, the reaction intensity was generally weaker than in the specimens. There were intercalated discs in the ultrastructure of ventricular myocardium from postnatal 3 to 120 days. Gap junction, fascia adherence and desmosome, all constituents of intercalated discs, had their own characteristic structure. In conclusion, these findings may be suggested that the formation of intercalated discs correlate to the distribution pattern of connexin43 and pan-cadherin in the myocardium of Sprague Dawley rat at each postnatal age. Therefore, authors hope that the data would be useful for the explanation of mechanism forming the junctional complexes between grafted cells and normal cardiac myocytes.
더보기서지정보 내보내기(Export)
닫기소장기관 정보
닫기권호소장정보
닫기오류접수
닫기오류 접수 확인
닫기음성서비스 신청
닫기음성서비스 신청 확인
닫기이용약관
닫기학술연구정보서비스 이용약관 (2017년 1월 1일 ~ 현재 적용)
학술연구정보서비스(이하 RISS)는 정보주체의 자유와 권리 보호를 위해 「개인정보 보호법」 및 관계 법령이 정한 바를 준수하여, 적법하게 개인정보를 처리하고 안전하게 관리하고 있습니다. 이에 「개인정보 보호법」 제30조에 따라 정보주체에게 개인정보 처리에 관한 절차 및 기준을 안내하고, 이와 관련한 고충을 신속하고 원활하게 처리할 수 있도록 하기 위하여 다음과 같이 개인정보 처리방침을 수립·공개합니다.
주요 개인정보 처리 표시(라벨링)
목 차
3년
또는 회원탈퇴시까지5년
(「전자상거래 등에서의 소비자보호에 관한3년
(「전자상거래 등에서의 소비자보호에 관한2년
이상(개인정보보호위원회 : 개인정보의 안전성 확보조치 기준)개인정보파일의 명칭 | 운영근거 / 처리목적 | 개인정보파일에 기록되는 개인정보의 항목 | 보유기간 | |
---|---|---|---|---|
학술연구정보서비스 이용자 가입정보 파일 | 한국교육학술정보원법 | 필수 | ID, 비밀번호, 성명, 생년월일, 신분(직업구분), 이메일, 소속분야, 웹진메일 수신동의 여부 | 3년 또는 탈퇴시 |
선택 | 소속기관명, 소속도서관명, 학과/부서명, 학번/직원번호, 휴대전화, 주소 |
구분 | 담당자 | 연락처 |
---|---|---|
KERIS 개인정보 보호책임자 | 정보보호본부 김태우 | - 이메일 : lsy@keris.or.kr - 전화번호 : 053-714-0439 - 팩스번호 : 053-714-0195 |
KERIS 개인정보 보호담당자 | 개인정보보호부 이상엽 | |
RISS 개인정보 보호책임자 | 대학학술본부 장금연 | - 이메일 : giltizen@keris.or.kr - 전화번호 : 053-714-0149 - 팩스번호 : 053-714-0194 |
RISS 개인정보 보호담당자 | 학술진흥부 길원진 |
자동로그아웃 안내
닫기인증오류 안내
닫기귀하께서는 휴면계정 전환 후 1년동안 회원정보 수집 및 이용에 대한
재동의를 하지 않으신 관계로 개인정보가 삭제되었습니다.
(참조 : RISS 이용약관 및 개인정보처리방침)
신규회원으로 가입하여 이용 부탁 드리며, 추가 문의는 고객센터로 연락 바랍니다.
- 기존 아이디 재사용 불가
휴면계정 안내
RISS는 [표준개인정보 보호지침]에 따라 2년을 주기로 개인정보 수집·이용에 관하여 (재)동의를 받고 있으며, (재)동의를 하지 않을 경우, 휴면계정으로 전환됩니다.
(※ 휴면계정은 원문이용 및 복사/대출 서비스를 이용할 수 없습니다.)
휴면계정으로 전환된 후 1년간 회원정보 수집·이용에 대한 재동의를 하지 않을 경우, RISS에서 자동탈퇴 및 개인정보가 삭제처리 됩니다.
고객센터 1599-3122
ARS번호+1번(회원가입 및 정보수정)